N ° CAS.: | 075040 |
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Formule: | 075040 |
EINECS: | Chemical Reagents |
Classification: | Réactifs Biochimiques |
Grade: | Br |
usage spécifique: | Pour But biologique, Pour microbiologique, De qualité technique, Utilisation Pratique |
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Utilisations :
Pour l'identification biochimique des micro-organismes.
Instructions du tube d'identification biochimique
1. Ouverture du flacon
Avant d'ouvrir les flacons, désinfection de surface avec 75% d'alcool de coton . Ouvrez ensuite le couvercle en plastique en suivant la direction de la flèche , puis ouvrez le couvercle en aluminium dans des conditions stériles .
2. Utilisation du tube d'identification biochimique
Les colonies ont été sélectionnées pour être testées avec coloration de Gram, une colonie fraîche a été inoculée dans un bouillon ordinaire et en culture à 37 pendant 18-24h ou diluée avec une solution saline stérile à 0.85% dans 0,5McFa-rland (environ 108cfu / mL), prélever 0.05-0,08mL (environ 1 à 2 gouttes) de bouillon ou de suspension bactérienne, et ajoutée dans un flacon micro-résistant. Placez ensuite le bouchon en caoutchouc, généralement en utilisant le bouchon plein (illustré à la figure 2 flacons à gauche), les circonstances particulières dans le tableau suivant indiquent le bouchon semi-fermé (illustré à la figure 2 les deux flacons de droite), placez le flacon dans la rainure du Neto (Figure 2), ou placez-le dans un porte-bouteille approprié et incubé à 35-37 .
Les résultats observés dans le tableau 1 ci-dessous.
Remarque : pour connaître les méthodes de vaccination, le temps d'incubation ou les méthodes de formation, veuillez vous référer aux instructions fournies avec chaque tube d'identification biochimique.
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Q2 :
Après avoir versé le milieu liquide sur la plaque , le milieu semble difficile à coaguler ou le temps de coagulation est plus long, est-ce un problème avec la qualité du produit?
A2 : la raison peut être :
L'hydratation requise dans le processus de préparation n'a pas été complètement faite, c'est-à-dire que l'eau distillée n'est pas suffisamment bouillir pour dissoudre la gélose. La proportion de gélose pouvant facilement se déposer dans le fond de la bouteille, si elle n'est pas complètement secouée après stérilisation à haute température, elle entraînera une teneur en gènes de culture de la gélose supérieure inégale et difficile à mettre en place.
Q3 :
Pourquoi certaines colonies de E. coli chromogènes de couleur moyenne non indiquées ci-dessus, mais également confirmées par des tests biochimiques pour E. coli (faux négatif)?
A3: E. MILIEU CHROMOGÈNE est basé sur le principe de l'enzyme spécifique d'E. coli et le plan, 94% d'E. coli ont une enzyme β-glucuronidase, avec le rôle du substrat enzymatique chromogène dans la formation de colonies bleu-vert. Et environ 4 % de E. coli n'a pas d'enzymes β-glucuronidase, y compris le problème O157 : Escherichia coli H7. Par conséquent, ces E. coli ne peuvent pas être affichés sur la couleur caractéristique de E. coli milieu chromogène, il est possible que le milieu chromogène soit faux négatif. Cependant, le milieu traditionnel de la même ne peut pas éviter le problème des faux négatifs, comme: Pas de gaz ou faible fermentation l'intolérance au lactose peut également souche 44.5 faux négatifs dans le milieu conventionnel. Pour cette petite partie de l'E. coli peut être détecté en utilisant d'autres méthodes.
T4 :
Pendant la culture anaérobie ou micro-aérobie, est-il nécessaire de retirer le sac de gaz de l'emballage ? Comment utiliser l'indicateur d'oxygène ?
A4 : pendant la culture anaérobie ou micro-aérobie, l'utilisation de la méthode de l'agent de gazage doit être effectuée conformément aux instructions du fabricant. Retirez le sac de papier de son emballage en plastique, mais ne le coupez pas. Déchirée l'emballage extérieur de l'indicateur d'oxygène, puis elle peut être utilisée.
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