Kit de test d′identification biochimique de Salmonella

• N ° CAS.: 2 Years
• Formule: Salmonella Test Kit
• EINECS: Biochemical
• Classification: Réactifs Biochimiques
• Grade: Br
• usage spécifique: Pour But biologique, Pour microbiologique, De qualité technique, Utilisation Pratique
• N° de Modèle.: 071740
• Content: Standard
• Usage: Réactifs de Laboratoire , Réactifs Analytique , Réactifs de Diagnostic , Réactif d′Enseignement
• Source: Biochemical Reagent
• Habit Appellation: Biochemical Reagent
• Demande: Industrie , Recherche Scientifique , Médical , Protection de l′Environnement, Agriculture
• Propriété: Réactif biochimique
• Paquet de Transport: N/a
• Spécifications: 10tests/box
• Marque Déposée: HKM
• Origine: China
• Capacité de Production: 5000 Boxes/Week

Description de Produit

 

Description du produit

 

Instructions pour le kit d'identification biochimique des bactéries

 

--071 740 identification biochimique de la boîte de Salmonella (10 types × 10 fois)

I) emballage des réactifs

 Dix types de réactifs de réaction biochimique (tableau 1), 10 flacons de solution saline stérile à 0.85 %, 1 flacon de 0.5 tubes pour turbidité McFarland, 10 pièces de pipette jetable.

II) utilisation de la méthode de l'ampoule

Avant d'ouvrir l'ampoule, désinfectez la surface avec du coton alcool à 75 %, puis ouvrez le couvercle en aluminium dans des conditions stériles en suivant le sens de la flèche. Le couvercle en aluminium a déchiré le bouchon du flacon (Figure 1).  Toute l'ampoule peut être jetée après utilisation et mise au rebut en autoclave.

Remarque : lors de l'utilisation d'un tube biochimique de cyanure de potassium, le bouchon en caoutchouc doit être serré pour éviter les faux positifs causés par la volatilisation du cyanure de potassium ! (Si vous trouvez la couleur du cyanure de potassium, le tube d'identification biochimique se transforme en sépia jaune pâle

Ou noir signifie alors qu'il est mauvais et ne peut pas continuer à utiliser)

III) la méthode d'utilisation de la boîte d'identification biochimique de Salmonella

        Salmonella est aérobie gram-négatif,non bacillus , avec flagella la température optimale est de 37 , le pH optimum est de 7.2 à 7.6.

Sur une culture de milieu solide à 37 pour des colonies de 24 h, les colonies ont montré une taille moyenne, lisse, ronde, humide, soulèvement, croissance uniformément trouble dans le milieu liquide. Les bactéries suspectes sont cueillies directement et cultivent sur une gélose triple sucre-fer et une gélose nutritive, puis placez les colonies suspectées dans une solution saline stérile, comparez avec le tube de turbidité McFarland 0.5, a préparé le 0.5McFarland (environ 108cfu / mL), Pipette 2 gouttes (environ 0,06mL) et ajoutez à chaque microtube biochimique. Placez le bouchon en caoutchouc sur l'ampoule après l'inoculation, généralement il est entièrement bouchon (illustré à la figure 2 flacons à gauche), et semi-obturé (Figure 2 flacons illustrés à droite) est nécessaire pour certaines situations particulières, debout dans la rainure de Neto (Figure 2), ou placé dans un portoir à flacons approprié, Et cultivés à 35-37 dans un incubateur, puis observez les résultats indiqués dans le tableau 1.

Remarque : s'il existe une méthode spéciale d'inoculation, de temps d'incubation ou de formation, veuillez consulter les instructions fournies avec chaque tube d'identification biochimique.

 

Tableau 1 identification biochimique de Salmonella

Nom du produit	résultats à déterminer		temps d'incubation (heures)	Instructions
	Positif	Négatif
Gélose triple sucre-fer	Produire de l'acide et tourner jaune produire de l'hydrogène sulfuré et tourner noir	décoloration	24	Prélever la colonie avec la boucle d'inoculation, après la ponction sur une érection  de culture en zigzag, à lavant zonée, en ampoule semi-bouloquée (flacons comme illustré sur la figure 2).
Eau peptonée	rouge	décoloration	24	Ajouter 2-3 gouttes de réactif indole après la cultulisation, ampoule semi-bouloquée (flacons comme indiqué sur le côté droit de la Figure 2) et observer immédiatement les résultats.
urée	rose pâle	orange-rouge	12-24
Cyanure de potassium	croissance	pas la croissance	24-48	les tubes à essai et les tubes témoins ont été positifs pour la croissance; le tube à essai ne se développe pas, la croissance du tube témoin a été négative.
Lysine décarboxylase	Le tube à essai devient bleu-vert, Le tube de contrôle devient jaune	Le tube à essai et le tube de contrôle deviennent jaunes	18-24	par plante a été saisi les bactéries d'acides aminés devraient également être vaccinés un tube de contrôle et ajouter la paraffine liquide stérile couvrant la surface du milieu 3-4 gouttes. Culture pendant 18-24 heures, aucun résultat positif, continuer à former 4 jours, puis faire une détermination finale par le résultat.
Mannitol, sorbitol	jaune	violet	8-24
Β-galactosidase (ONPG))	jaune	jaune clair ou incolore	12-24

 

 

               Remarque : le réactif est placé dans l'ordre du catalogue HKM de gauche à droite .

 

 

          

Emballage et expédition

Matériau d'emballage: 10types pour 10 tests

 

Détails :

gélose triple sucre-fer 1.075750
2.075240 eau peptonée
3.075170 urée
4.07330 tube d'essai de croissance au cyanure de potassium (KCN)
5.075340 tube de contrôle de croissance du cyanure de potassium (KCN)
6. 075280 lysine décarboxylase
7. 075290 acide aminé décarboxylase
8. 075040 mannitol
9. 075090 sorbitol
10. 075180 ONPG B- GALACTOSIDASE (ONPG)

 

Additifs réactif
029030 réactif d'indole kovacs
029110 paraffine liquide

 

 

Nos services

1.offre d'échantillon gratuit pour les tests .

2.l'équipe R & D fournit une assistance technique.

3.fournir l'emballage, l'étiquetage de personnalisation OEM.

 

 

FAQ

 

Q1 :

Parfois, la couleur des milieux de culture déshydratés entre les lots présente des différences subtiles. Cela affecterait-il les résultats des tests ?

A1:les conditions de source et de stockage de la matière première sont différentes, il peut donc y avoir une légère différence de couleur, ce qui est un phénomène normal. Les produits de notre entreprise doivent faire l'objet d'une inspection rigoureuse et d'une vérification de la biologie sensorielle avant la vente, afin de s'assurer que toutes les caractéristiques des indicateurs du produit sont conformes aux normes de l'entreprise dans la mesure permise, sans affecter les résultats des tests.

 

Q2 :

Après avoir versé le milieu liquide sur la plaque , le milieu semble difficile à coaguler ou le temps de coagulation est plus long, est-ce un problème avec la qualité du produit?

A2 : la raison peut être :

L'hydratation requise dans le processus de préparation n'a pas été complètement faite, c'est-à-dire  que l'eau distillée n'est pas suffisamment bouillir pour dissoudre la gélose. La proportion de gélose pouvant facilement se déposer dans le fond de la bouteille, si elle n'est pas complètement secouée après stérilisation à haute température, elle entraînera une teneur en gènes de culture de la gélose supérieure inégale et difficile à mettre en place.

 

Q3 :

Pourquoi certaines colonies de E. coli chromogènes de couleur moyenne non indiquées ci-dessus, mais également confirmées par des tests biochimiques pour E. coli (faux négatif)?

A3: E. MILIEU CHROMOGÈNE est basé sur le principe de l'enzyme spécifique d'E. coli et le plan, 94% d'E. coli ont une enzyme β-glucuronidase, avec le rôle du substrat enzymatique chromogène dans la formation de colonies bleu-vert. Et environ 4 % de E. coli n'a pas d'enzymes β-glucuronidase, y compris le problème O157 : Escherichia coli H7. Par conséquent, ces E. coli ne peuvent pas être affichés sur la couleur caractéristique de E. coli milieu chromogène, il est possible que le milieu chromogène soit faux négatif. Cependant, le milieu traditionnel de la même ne peut pas éviter le problème des faux négatifs, comme: Pas de gaz ou faible fermentation l'intolérance au lactose peut également souche 44.5 faux négatifs dans le milieu conventionnel. Pour cette petite partie de l'E. coli peut être détecté en utilisant d'autres méthodes.

 

T4 :

Pendant la culture anaérobie ou micro-aérobie, est-il nécessaire de retirer le sac de gaz de l'emballage ? Comment utiliser l'indicateur d'oxygène ?

A4 : pendant la culture anaérobie ou micro-aérobie, l'utilisation de la méthode de l'agent de gazage doit être effectuée conformément aux instructions du fabricant. Retirez le sac de papier de son emballage en plastique, mais ne le coupez pas. Déchirée l'emballage extérieur de l'indicateur d'oxygène, puis elle peut être utilisée.

 

 

 

 

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